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要害詞：豬傳染性胃腸炎；豬流行性腹瀉；比較研究
豬傳染性胃腸炎(porcinetransmissiblegastroenteritis，TGE)和豬流行性腹瀉(porcineepidemicdiarrhoea，PED)分別是由豬傳染性胃腸炎病毒(TGEV)和豬流行性腹瀉病毒(PEDV)引起的以豬嘔吐、腹瀉、脫水為特征的傳染病。TGE豬傳染性胃腸炎對新生仔豬具有高度致死率，雖然不同年齡的豬對這種病毒均易感，但5周齡以上豬的死亡率則很低。1945年，Doyle在美國首次報道發生了本病。我國1956年在廣東省首次報道，給養豬業帶來嚴重危害。豬流行性腹瀉是一種豬腸道傳染病，哺乳仔豬受害最嚴重。本病主要發生在冬季，夏季也可發生。20世紀70年代初首先發現于英國和比利時，我國從20世紀80年代初開始陸續有本病的流行。
1973年先后在我國上海、遼寧、吉林、黑龍江、四川等地分離到TGE和PED病毒。目前，已成為重要的豬病毒性腹瀉病之一。多年來，包括我國在內的許多國家為了預防和控制TGE和PED，曾投入了一定的人力、物力和財力，但迄今為止這兩種疾病仍在世界上許多國家存在，且PED可與TGE混合感染，二者在流行病學、臨床癥狀、剖檢變化上非常相似，給臨床診斷帶來一定困難。近年來隨著分子生物學技術的發展，TGE與PED的研究取得了較大進展。本文就TGE和PED近年來的研究進行比較綜述如下。
1．病原特征
豬傳染性胃腸炎病毒和豬流行性腹瀉病毒皆屬于套式病毒目冠狀病毒科、冠狀病毒屬(國際病毒分類委員會第7次分類報告，2000年)。
朱維正等發現PED與TGE在血清學上的不一致，馬思奪采用聚乙二醇沉淀法結合蔗糖梯度密度離心法純化PED，以改良的SDS—PAGE分析表明，PED粒子有六種結構蛋白，其分子量分別為P133KD、P240KD、P353KD、P462KD、P5163KD和P6190KD，除P5(纖突蛋白)與TGE在電泳條中帶排布有顯著差異外，其余5種結構蛋白則與TGE很相似。上海農科院畜牧所報道，用熒光抗體技術發現PED和TGE在小腸粘膜絨毛上皮細胞內的感染存在著動態差異，TGE首先感染小腸絨毛基部的上皮細胞，以后再向絨毛的頂部發展，而PED在早期首先感染絨毛上部，以后逐步向絨毛基部發展。
2．流行病學
2．1TGE流行病學
2．1．1流行特點:呈季節性發生，12月至次年4月發病最多，夏季發病少。在新疫區主要呈暴發性流行，在老疫區則呈地方性流行。
2．1．2臨床癥狀:潛伏期很短，約15～18h，有的可延長至2～3d，傳播快，幾天內可波及全群。典型癥狀是出現短暫的嘔吐，伴有或繼發水樣腹瀉，糞便黃色、綠色或白色，因脫水體重迅速下降。
病理剖檢：病變主要在胃和腸道，以小腸病變為主，表現為腸壁變薄透明，腸內容物稀薄如水，呈黃色，偶然可見胃底出血。
２．1．2PED流行病學
2．1．1流行特點:本病在12月至次年3～4月間多發，夏季也有豬感染發病，但相對較少。哺乳仔豬、斷奶仔豬和育肥豬感染發病率可高達100，成年母豬發病率較低，為15～19。哺乳仔豬受害最嚴重，病死率平均50。本病通常在有一頭豬發病后，同圈或毗鄰豬相繼于一周內發病，經過2～3周后流行終止.
2．1．2臨床癥狀:潛伏期，新生仔豬為24～36h，育肥豬為2d以上。病豬表現嘔吐、腹瀉、脫水，開始時糞便黏稠，后變成水樣便;精神沉郁，厭食，消瘦并衰竭。1周齡以內的哺乳仔豬常于腹瀉后2～4d內死亡。斷奶豬、育肥豬癥狀輕，發病4～7d后逐漸恢復正常。
病理剖檢：剖檢可見腸壁變薄，腸內有黃色粘稠液體，小腸粘膜絨毛大部分萎縮變短，上皮細胞壞死脫落。全身淋巴結腫大、出血，腎小管上皮細胞變性壞死。
3．診斷
目前，對這兩種傳染病的診斷方法主要有病毒中和試驗，免疫熒光法，免疫電鏡法，ELISA法RT-PCR法。隨著分子生物學的不斷發展，ELISA法和RT-PCR法以其敏感性高、特異性強越來越受到人們的重視。
3．1TGE診斷方法
3．1．1病毒的分離與鑒定原代和次代豬腎細胞、豬腎傳代細胞系、豬唾液腺原代細胞、豬甲狀腺原代細胞以及McClurkinST傳代細胞已成功地用來從被感染豬的糞便及腸道內容物中分離TGEV。在ST或豬甲狀腺細胞上的典型CPE由具有膨脹的、圓形或長形外觀如氣球的細胞組成。ST傳代細胞已用于蝕斑或IF實驗以檢測TGEV野毒株，Kemeny(1978)。為提高病毒的分離率，在細胞培養液中加胰酶制劑或胰蛋白酶和使用較老的細胞可進一步提高ST細胞的敏感性，Bohl(1979)。Pocock和Garwes(1975)報道，在次代豬甲狀腺細胞用弱酸性營養液時TGEV增殖滴度最高。
3．1．2電鏡法檢測通過電鏡負染色法證實，在感染豬腸內容物和糞便中有TGEV。發病期間病毒存在于病豬的許多器官中，實驗證實除脾臟外，其他器官均可檢測到病毒，但是以空腸、十二指腸和腸系膜淋巴結中含毒量最高。通過電鏡觀察，病毒多分布在胞漿的空泡里和微絨毛間隙。在微絨毛間的病毒往往呈串球狀排列。研究證實，免疫電鏡(IEM)比常規EM技術更好，前者對檢測臨床樣品或細胞培養物中的TGEV更敏感，并可提供病毒血清學鑒定。此外，用IEM更易區分TGEV和常見的膜類碎片，而且同時可檢測其它腸道病毒的存在。經IEM觀察，TGEV與PEDV之間未見到免疫交叉反應。
3．1．3免疫熒光法檢測免疫熒光法(IF)和免疫過氧化物酶技術都可應用，但前者較常用。若IF或免疫過氧化物酶試驗呈陽性，并伴有腹瀉癥狀，則幾乎肯定為TGEV。國外在小腸上皮細胞中檢測TGE病毒抗原，采集病死豬小腸或腹瀉早期將豬捕殺，取空腸和回腸粘膜涂片或將空腸和回腸制備冷凍切片進行直接或間接免疫熒光檢測的方法已經建立，并得到廣泛應用。但本方法必須在死后或撲殺后才能進行。我國哈爾濱獸醫研究所研制成功了扁桃體采樣器，采取豬只的扁桃體組織，做成冷凍切片，進行直接免疫熒光法檢測TGE病毒抗原。本法是活體診斷，可以迅速做出判定，已廣泛應用于疫病普查和口岸檢疫。另外，一種用抗TGEV高糖蛋白N的單克隆抗體免疫過氧化物酶技術來檢測TGEV(小腸組織)的方法已建立，且TGEV的單克隆抗體已被用IF或免疫過氧化物酶試驗中。用上述兩種實驗方法已在呼吸道組織和鼻腔上皮細胞中檢測出TGEV。用抗TGEV單克隆或多克隆抗體雙層夾心ELISA方法已被廣泛應用于檢測在細胞培養、糞便和腸內容物中的TGEV，是一種快速且適用于從活豬中取得大量樣品的診斷方法。
3．1．4血清學診斷TGEV抗體可通過數種不同的血清學方法檢測，如間接熒光抗體試驗、間接免疫過氧化物酶試驗、放射免疫沉淀試驗、病毒中和試驗(VN)等，最常用的是VN試驗。近年來研究發現，TGEV與豬呼吸道冠狀病毒(PRCV)有一定相關性，血清中和試驗(SN)特異性不強，可能出現假陽性。但在大批量檢測或對群體進行監測時，可先用SN試驗進行篩選，對陽性樣品再用如阻斷酶聯免疫吸附試驗(B-ELISA)等特異性很強的試驗進行鑒定，使TGE抗體檢測更為準確、快速。張凈等用阻斷ELISA和SN法對來自美國和中國的196份豬血清檢測TGEV抗體，結果表明上述兩種方法的檢測結果存在顯著差異。這些TGEV-SN陽性的血清(121頭份)在用阻斷ELISA檢測PRCV抗體時有57頭呈現陽性反應，這與Callebaut等(1989)的試驗結果相一致，說明用SN法檢測TGEV抗體時出現假陽性是由于PRCV與TGEV之間能呈完全中和交叉反應所致。周仲芳等[6]報道了用桿狀病毒表達系統生產的TGE病毒纖突蛋白(S蛋白)建立了一種競爭ELISA檢測豬TGE血清抗體，獲得了較為理想的特異性和準確性。之后又報道了采用同樣的重組抗原建立了一種間接ELISA用于TGE血清抗體的檢測，同時由于在結果判定中采用終點滴定技術，使得檢測結果的判定更直觀和迅速。
3．1．5分子生物學診斷近年來，已發展了用核酸雜交探針技術如放射性探針膜雜交、放射性標記探針原位雜交來檢測糞便樣品，感染組織或感染細胞中的TGEV基因序列。用這些探針可區別不同的腸TGEV毒株。RT-PCR和非放射性標記物cDNA探針也已被用來區分TGEV和PRCV分離物。1997年，Woods和Paton等應用RT-PCR技術檢測TGEV，結果證實RT-PCR是一種特異、敏感的TGEV診斷方法。李軍等[8]建立了檢測TGEV的RT-PCR方法。用此RT-PCR方法檢測56份豬腹瀉糞樣，同時用夾心ELISA法作對照。結果顯示，RT-PCR法檢測的20份陽性糞樣，用夾心ELISA法檢測有14份呈陽性，兩者的符合率為89。試驗結果表明，RT-PCR法可檢出1pg的TGEVRNA，比夾心ELISA法敏感性更高。最近KimL和ChangKO針對TGEV與PRCV二者S基因部分序列的差異性發展了一種將巢式PCR與RT-PCR相結合的方法即RT-巢式PCR法。
3．2PED診斷方法
3．2．1免疫電鏡法IEM法既可用已知的PEDV高免血清檢測未知抗原，又可用已知的PEDV抗原檢測未知抗體。王繼科等把抗原和抗體分別經10000g離心、免疫復合物又經12000g離心、最后在電鏡下直接觀察到典型的病毒粒子形成的免疫復合物，建立了具有3次篩選作用的改良的IEM法，具有簡便、直觀、快速和定性正確等優點。
3．2．2免疫熒光法用直接免疫熒光法(FAT)檢測PEDV是可靠的特異性診斷方法，目前應用最為廣泛。崔現蘭等應用FAT檢查病豬小腸的冷凍切片或小腸抹片，對PEDV人工感染仔豬的檢出率為91.4，電鏡觀察陽性率為47.8。應用間接免疫熒光法(IFAT)對PED陽性豬血清的檢出陽性率為89。林志雄等用適應于Vero、PK15等傳代細胞株生長繁殖的PEDV-G1株建立直接免疫熒光法。該方法并不和豬傳染性胃腸炎病毒、豬細小病毒、輪狀病毒和大腸桿菌等發生交叉反應。
3．2．3微量血清中和試驗林志雄等建立了PED微量中和試驗，采用適應于傳代細胞生長的PEDVG1株，以PK15作指示細胞，48h判定。研究證實本方法檢驗準確、可靠，具有較高的敏感性，可用于流行病學調查。
3．2．4ELISA法ELISA法最大的優點是可從糞便中直接檢查PEDV抗原，目前應用也較為廣泛。陳茹等用分離純化的PEDV抗原，建立斑點酶聯免疫吸附試驗(Dot-ELISA)檢測豬流行性腹瀉(PED)抗體。采用此方法分別對來自加拿大、臺灣省進口的種豬和海南省、廣東省種豬群的血清樣共834份進行了檢測，檢測的抗體陽性率達21。用瓊擴試驗與Dot-ELISA比較，陰性血清樣品檢測符合率為100，而陽性血清樣品檢測符合率為31.8，說明后者更敏感，且該試驗重復性較好。于強等用PEDV吉株豬胎腸單層細胞培養物，以凍融法制備抗原，建立了間接ELISA法檢測PED抗體的方法。KimO等建立了單克隆抗體基礎上的免疫組化法，該方法可在福爾馬林固定、石蠟包埋的腸組織中準確而特異的檢出PEDV，可用于鑒別診斷TGEV與PEDV。
3．2．5RT-PCR法Ishikawa等根據S基因序列設計了一對可擴增目的片段854bp的引物，成功的建立了診斷PEDV的RT-PCR法，可進行細胞毒和糞便毒的檢測，靈敏度可達100TCID50mL，并可在8h內測出。Kubota等[12]根據N基因序列設計了一對可擴增目的片段540bp的引物，成功地建立了診斷PEDV的RT-PCR法，可進行細胞毒和糞便毒的檢測。在韓國KimO等已建立了TGEV和PEDV的二聯RT-PCR診斷方法，可同時檢測出10TCID50mL的TGEV和PEDV。KimO等對免疫組化、原位雜交、RT-PCR3種方法進行了比較，認為RT-PCR法檢測結果的重復性最好。此外，KimO等]還建立了鑒別TGEV和PEDV的多重巢式RT-PCR法。國內喬憲鳳等以PEDV的膜蛋白(M)的RNA為模板，根據Durate等人發表的基因序列，設計3條位于PEDV膜蛋白(M)基因上的引物，進行RT-PCR反應，確立了RT-PCR最適反應條件。
4鑒別診斷
豬傳染性胃腸炎及流行性腹瀉皆屬于病毒性腹瀉病，診斷時要注重與一般條件因素引起的腹瀉，飼料因素引起的腹瀉，以腹瀉為主要癥狀的傳染病，伴有腹瀉癥狀但以其他臨床癥狀為主的疾病進行鑒別診斷。
5防治
哈爾濱獸醫研究所的科研人員研制出豬傳染性胃腸炎和豬流行性腹瀉氫氧化鋁滅活二聯苗，此苗在母豬產前20-30d接種4ml，仔豬斷奶后10-15d接種一次，免疫效果比較好。此外，劉萬鈞等在實驗室證實了豬白細胞干擾素在Vero細胞培養中和乳豬空腸結扎腸段中對PEDV有明顯的干擾作用，還用干擾素對斷奶仔豬進行PED防治試驗取得了良好結果。對豬病毒性腹瀉癥無特效治療方法，但為了防止繼發感染和脫水造成衰竭，降低死亡率和促進康復，可以采取一些對癥療法。
